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doi: 10.1111/j.1365-2222.2008.02995. xAlergia clínica y experimental, 38, 987-994 PAPEL ORIGINAL Alergia clínica Oc Los2008 autores 

Compilación de revistas Oc Blackwell2008 Publishing  

Ltd 

Inmunoterapia de racimo con una mezcla modificada con glutaraldehído de hierbas produce una mejora en las pruebas de provocación nasal  específica en menos de meses 2.5de tratamiento 

J. Subiza*, A. Feliu’*, J. L. Subizaw, J. Uhligz y E. Ferna’ndez-Caldas‰ 

*Centro de Asma y Alergia Subiza, wInmunotek, Madrid, España, zRoxall Medizin, Hamburgo, Alemania y ‰Dr Beckmann Pharma, Seefeld, Alemania 

Clínica y  

experimental Alergia 

Correspondencia: 

Dr. Javier Subiza, Centro de Asma y  Alergia Subiza, Calle General Pardin˜as,  116, Madrid España28006,. 

Correo electrónico:  

jsubiza@mi.madritel.es 

Introducción  

Resumen 

Antecedentes La inmunoterapia en racimo se utiliza cada vez más. Permite una fase de  acumulación rápida y la administración de dosis más altas de alérgeno en un periodo de  tiempo más corto. 

Objetivos Evaluar el efecto de la inmunoterapia preestacional a corto plazo con una vacuna  de alérgenos modificada con glutaraldehído en la reducción de la hiperreactividad nasal  específica en las pruebas de provocación nasal. 

Materiales y métodos Se seleccionaron 33 pacientes. Todos los pacientes tenían antecedentes  positivos de rinitis alérgica y pruebas cutáneas al polen de gramíneas, aunque la mayoría de  ellos (72,7%) estaban sensibilizados también a otros alérgenos. El estudio se llevó a cabo fuera  de la temporada de polen y los pacientes no recibieron ningún tratamiento farmacológico  durante este periodo de tiempo. Se establecieron dos grupos aleatorios de pacientes; Grupo  A: 22 pacientes (13 mujeres y nueve hombres) y Grupo B, pacientes de control11 (siete  mujeres y cuatro hombres). Los pacientes del Grupo A recibieron inmunoterapia con una  vacuna que contenía un 50% de las hierbas silvestres Trisetum paniceum y Dactylis  glomerata. Todos los pacientes se sometieron a pruebas de provocación nasal (NPT)  tituladas antes y después de la finalización del estudio (2,3 y 2,8 meses para los grupos A y  B, respectivamente). El esquema de administración consistió en y0.1 mL0.2 al día seguido1, por y0.3 mL0.5 al día mL7,0.5 después de semanas2 seguido de mL0.5 mensuales. Se utilizó  un único vial que contenía una concentración de alérgenos de TU/mL10000 (105 mg de  proteína total y mg24.6 de alérgenos5 del Grupo más/mL1). Se administró una media de  inyecciones6.5 a los pacientes del Grupo A entre las TNP. 

Resultados No hubo diferencias significativas entre ambos grupos al inicio del estudio (P =  0,48). Al final, sólo los pacientes del Grupo A necesitaron concentraciones umbral  significativamente mayores para un TPN positivo que al principio (P = 0,002). Conclusiones Una inmunoterapia preestacional de corta duración con una vacuna  modificada que contiene una mezcla de polen de gramíneas es eficaz según una medida  objetiva después de sólo una media de meses 2.3de tratamiento. 

Palabras clave: alérgenos, rinitis alérgica, inmunoterapia de grupo, Dactylis, desafíos  nasales, Trisetum 

Presentado en octubre15 de 2007; revisado en febrero de 192008; aceptado en febrero 272008. 

una fase de acumulación rápida y segura, alcanzando el  

mantenimiento en sólo unas pocas inyecciones. Fue  

descrita por primera vez por Norman et al. [3] utilizando  

La inmunoterapia es segura y eficaz para tratar las  enfermedades respiratorias alérgicas producidas por la  inhalación de alérgenos del polen de gramíneas [1, 2].  La inmunoterapia en racimo se utiliza cada vez más  como método seguro y eficaz de inmunoterapia. Permite  

el recientemente 

desarrollado alergoides. Aunque también se ha  explorado con éxito con alérgenos nativos [4-6], la  disponibilidad comercial de los alergoides en Europa  se considera la razón más importante para el aumento  del uso de la inmunoterapia de racimo. Se ha  propuesto que la inmunoterapia con alérgenos permite  la administración de dosis más altas de alérgenos [7,  8] y, por lo tanto, los efectos clínicos de la  inmunoterapia con alérgenos pueden comenzar antes  que con la inmunoterapia convencional.

988 J. Subiza y otros 

Se han publicado varios estudios en los que se utilizan  alérgenos de hierba para la inmunoterapia subcutánea y  que muestran diversos grados de eficacia. La  comparación de estos estudios es difícil, ya que el uso  de formaldehído [9-16] o glutaraldehído [17-20]  produce alérgenos con características diferentes. Otras  diferencias importantes son la duración de los estudios,  las dosis administradas, los programas de administración  y las formas de evaluar la eficacia. Mientras que algunos  estudios han utilizado protocolos apresurados o en  racimo y han evaluado la seguridad, otros han utilizado  esquemas de acumulación más tradicionales y han  evaluado la eficacia utilizando diferentes parámetros.  Hasta donde sabemos, no se han publicado estudios que  aborden el efecto clínico preestacional sobre la  hiperreactividad nasal específica de las gramíneas de un  programa de inmunoterapia de racimo a corto plazo con  alérgenos modificados con glutaraldehído. Los  esquemas de inmunoterapia preestacional suelen utilizar  un protocolo de inmunoterapia en racimo, que consiste  en la administración agrupada de dos o más dosis de  inmunoterapia en el día1. El mantenimiento puede  alcanzarse en 1-2 semanas. 

En el presente estudio, se ha evaluado el efecto clínico  preestacional de una vacuna con alérgenos de la hierba  polimerizados con glutaraldehído, administrada después  de un prototipo de racimo. Se utilizaron pruebas de  provocación nasal tituladas (NPT) realizadas  inmediatamente antes y después de la inmunoterapia  como medida de resultado objetiva. La formulación de  la vacuna contenía una mezcla al 50% de Trisetum  paniceum y Dactylis glomerata. Estas hierbas silvestres  fueron seleccionadas por su amplia distribución en  Madrid y sus alrededores [21]. T. paniceum es una  especie de hierba perteneciente a la familia Poaceae,  característica del clima continental mediterráneo. También  se ha descrito como una de las principales causas de  alergia tipo I en la Comunidad de Madrid [22]. Esta  especie, y principalmente Trisetum flavescens, también está  presente en el centro y norte de Europa [23]. D.  glomerata también pertenece a la familia de las poáceas  y está ampliamente distribuida en España y en la  mayoría de los países europeos. Mientras que la  alergenicidad de D. glomerata está bien establecida [24], se  sabe menos sobre la alergenicidad de T. paniceum, pero  parece que también contiene grupos y1 alérgenos5 [25].  Para el presente estudio, se seleccionaron pacientes de  una clínica ambulatoria por su historial clínico de rinitis  alérgica, y pruebas cutáneas positivas, a las gramíneas sin  ninguna restricción a otras sensibilizaciones. Los resultados  indican que este tratamiento es eficaz, según lo detectado  por las NPT, en sólo meses 2.3de 

inmunoterapia incluso en pacientes polisensibilizados. 

Materiales y métodos  

Diseño del estudio, criterios de inclusión y exclusión 

El estudio se realizó como un ensayo prospectivo,  controlado y abierto. Los pacientes fueron aleatorizados  y asignados al grupo de tratamiento o al de control. El  estudio se realizó fuera de la temporada de polen, entre  noviembre y

febrero y los pacientes no recibieron ningún tratamiento  farmacológico ni medicación de rescate, ya que los  pacientes no presentaban síntomas. Antes de la  inclusión en el estudio, todos los pacientes fueron  sometidos a pruebas cutáneas con una batería de alérgenos  y fueron seleccionados sobre la base de una historia  clínica de rinoconjuntivitis alérgica y pruebas de  punción cutánea positivas a los alérgenos del polen de  hierba. Los criterios de inclusión fueron los siguientes  (1) rango de edad entre y12 años60; (2) historia positiva  de rinitis alérgica con o sin asma al menos durante las 2  últimas temporadas de polen de gramíneas, (3) pruebas  de punción cutánea positivas a gramíneas, (4) y sin  inmunoterapia previa y (5) una prueba de provocación  nasal positiva a BU/mL41852 y negativa a 

salina. Los criterios de exclusión para recibir  inmunoterapia 

Los criterios de evaluación fueron los descritos en el  documento de posición de la OMS sobre inmunoterapia  con alérgenos. Además, los pacientes debían realizar  pruebas nasales iniciales y finales con extractos de  alérgenos de gramíneas para poder ser evaluados  correctamente y analizar los datos. El protocolo de  investigación fue aprobado por la Junta de Revisión del  Centro Clínico y se obtuvo el consentimiento informado  por escrito de cada paciente. 

Población de pacientes 

Treinta y tres pacientes (20 mujeres y hombres13, edad  media 

30,2 años) cumplían los criterios mencionados y fueron  aleatorizados mediante la utilidad aleatoria del software  Corell Word Perfect (Corel Corporation, Ottawa, Canadá)  

e incluidos en el estudio. Los números aleatorios iban  del 1 al 9. Los pacientes a los que se les asignaron los  números 1, 3 o 5 se incluyeron en el grupo de control, y  los asignados a los números 2, 4, 6, 7, 8 o 9 se  incluyeron en el grupo de inmunoterapia. En total, 24  individuos tenían rinoconjuntivitis sola y nueve  rinoconjuntivitis y asma. Tras la aleatorización, los  individuos 22(13 mujeres y nueve hombres, con una  edad media de 29,7 años) fueron asignados al Grupo A y  11 individuos (siete mujeres y cuatro hombres; edad  media de años30.8) al Grupo B. En la primera visita se  registraron los historiales clínicos y las terapias previas.  Ninguno de los pacientes recibía tratamiento  farmacológico. La duración media de la rinitis alérgica  fue de años6 (rango, 2-9 años). 

Pruebas cutáneas 

Todos los pacientes33 fueron sometidos a pruebas  cutáneas con una batería estandarizada de aeroalérgenos  disponible en el mercado en el HEP50 (Inmunotek,  Madrid, España), incluyendo T. paniceum, 

D. glomerata, Olea europaea, Platanus hispanica, Cupres sus arizonica, Chenopodium album, Dermatophagoides  pteronyssinus, Blatta orientalis, caspa de gato y de perro, y  extractos no estandarizados de Alternaria alternata y  Aspergillus fumigatus. El contenido de alérgenos  principales (Grupo más1 5) en T. paniceum y D. glomerata  era de aproximadamente 80 mg/mL. Se utilizó clorhidrato  de histamina a 10 mg/mL como control positivo, y glicerol 

salina al 50% como control negativo. Se evaluaron todas  las zonas de prueba de la piel 

Oc Los2008 autores 

Compilación de la revista Oc Blackwell2008 Publishing Ltd, Clinical and Experimental Allergy, : 38987- 994

después de 20 minutos. El área de cada llaga se midió por  plannimetría utilizando el sistema Prick-Film  (Inmunotek, Madrid, España). Brevemente, el área de  las heridas se dibujó en el dispositivo de la piel y se  escaneó utilizando el software Prick-Film. Los  resultados de la prueba de punción cutánea se  expresaron en mm2. Una reacción positiva se definió  como una llaga con al menos la mitad del tamaño de la  histamina que carecía de reacción al control negativo [26]. 

Calendario de vacunación y tratamiento 

La vacuna contenía una mezcla al 50% de dos extractos  estandarizados de polen de gramíneas (D. glomerata y T.  paniceum) en forma de alérgenos polimerizados  (Clustoids, Roxall Medizin/Dr Beckmann Pharma  GmbH) fabricados por Inmunotek, Madrid, España.  Clustoid es un preparado de alérgeno de depósito  adsorbido con hidróxido de aluminio, producido por la  modificación del alérgeno mediante glutaraldehído, que  se presenta en un único vial a una concentración de 10  000 TU/mL. El contenido de alérgenos mayores se estimó  por densitometría de barrido [27] en ambas especies de  hierba en el paso previo a la modificación, tal como se  sugiere en la Farmacopea Europea [28]. El contenido de  alérgenos de hierba de los grupos 5 más 1 de la vacuna fue  de mg/mL24.6. 

El esquema de administración consistió en la  inyección el primer día de mL0.110.2 en diferentes  brazos a un intervalo de min30, seguido de mL0.310.5 el  séptimo día y otros 0,5 mL el día 15. Posteriormente, se  administraron 0,5 mL a intervalos mensuales durante la  duración 

del estudio. Después de la última inyección, se  programó a los pacientes para la prueba de provocación  final. 

Evaluación de la seguridad 

La seguridad se evaluó siguiendo el documento de  posición sobre inmunoterapia con alérgenos de la  Academia Europea de Alergia e Inmunología Clínica  (EAACI) [29]. Las reacciones locales se cuantificaron  midiendo el diámetro del eritema de la reacción. Las  reacciones se clasificaron como inmediatas (aparición  durante los primeros 30 minutos tras la administración) y  retardadas (aparición posterior). Las reacciones  inmediatas con un diámetro inferior a 5 cm y las  reacciones retardadas inferiores a 10 cm se consideraron  clínicamente irrelevantes. Las reacciones sistémicas se  clasificaron de la siguiente manera: grado 0: ausencia de  síntomas; grado 1: síntomas inespecíficos – reacciones  probablemente no mediadas por IgE, es decir malestar,  cefalea o artralgia; grado 2: reacciones sistémicas leves –  rinitis o asma leves que responden adecuadamente a los  antihistamínicos o al tratamiento con agonistas2 b;  grado 3: reacciones sistémicas que no ponen en peligro  

Inmunoterapia de racimo con una mezcla de hierba modificada con  glutaraldehído 989 

la vida – urticaria, angioedema o asma grave, que  responden bien al tratamiento; y grado 4: shock  anafiláctico – reacción rápidamente evocada de picor,  rubor, eritema u obstrucción bronquial, que requiere  tratamiento intensivo. Las reacciones inmediatas fueron  evaluadas por el alergólogo responsable. Los pacientes  fueron in 

Oc Los2008 autores

En caso de reacciones retardadas, se debe contactar  inmediatamente con la clínica o con el alergólogo  responsable. 

Prueba de provocación nasal titulada 

Las TNP se realizaron siguiendo los métodos descritos  anteriormente [30]. El flujo inspiratorio nasal máximo  (PNIF) se midió en litros por minuto utilizando el  medidor de flujo inspiratorio nasal In-Check (Clement  Clarke International Ltd, Londres, Reino Unido). Se  realizaron tres mediciones consecutivas y sólo se utilizó  el valor máximo para el cálculo. Cada voluntario fue  entrenado para utilizar la técnica antes de la  provocación nasal. Las pruebas de provocación  comenzaron siempre con la determinación de la línea  de base para la PNIF y utilizando el diluyente  Inmunotek como control. Se realizó una prueba de  provocación con concentraciones de alérgenos en serie  para determinar la concentración de alérgenos que  provocaba una reacción basada en la presencia de al  menos dos de los tres criterios siguientes (1) una  disminución de la PNIF del 40% de la línea de base; (2)  cinco o más estornudos en un período de minutos10; y  (3) al menos 

0,5 g de secreciones nasales (evaluadas mediante el  pesaje del tejido). El alérgeno (0,2 mL/ fosa nasal) se  nebulizó en concentraciones crecientes en cada fosa nasal  cada 15 minutos con un atomizador DeVilbis. Se  registraron la PNIF (la mejor de tres mediciones), los  estornudos y las secreciones nasales 10 minutos después  de la provocación con cada concentración de alérgeno  hasta que se alcanzó el umbral de reacción. Los  

pacientes con una reacción positiva, y que cumplían los  criterios de entrada (reacción positiva con una  concentración de alérgeno de BU/mL41852), fueron asignados aleatoriamente a recibir, o no, inmunoterapia. 

La evaluación del paciente se realizó de forma ciega.  Se utilizó el mismo lote de alérgenos estandarizados  (mezcla de dos pólenes de gramíneas; Inmunotek,  Madrid, España) durante todo el estudio. Se prepararon  diluciones seriadas del extracto de alérgeno (206, 617,  1852 y 5556 BU/mL) inmediatamente antes de la prueba  de provocación en diluyentes estériles (solución salina  sin pirógenos con 0,05% de albúmina humana). El  contenido de alérgenos principales (grupos 1 y 5) en  5556 BU/mL fue de 9 mg/mL. Las pruebas nasales con  alérgenos no se realizaron si se daba alguno de los  siguientes casos (1) reacción positiva con solución  salina, (2) presencia de rinitis alérgica inestable y/o  asma, tasa de flujo máximo inferior al 20% de los  valores normales, (3) signo o síntomas de rinitis  alérgica, vírica o infecciosa 2 semanas antes de las  pruebas de provocación nasal; (4) síntomas o signos de  rinitis alérgica durante el transcurso del estudio; (5)  patología nasal (desviación importante del tabique nasal o  poliposis importante), y (6) cualquier medicación que  pueda afectar a los parámetros de la prueba  (antihistamínicos orales o tópicos, esteroides o  antidepresivos con propiedades antialérgicas). 

Recuento de polen 

Los granos de polen se muestrearon con una trampa  volumétrica de esporas según las técnicas descritas  anteriormente [21]. A 

Compilación de la revista Oc Blackwell2008 Publishing Ltd, Clinical and Experimental Allergy, : 38987-994

990 J. Subiza y otros 

La trampa Burkard (Burkard Manufacturing Co.,  Rickmans- worth, Herst, Reino Unido) se instaló en el  tejado de la clínica (20 m de altura), que está situada en el  este de la zona urbana de Madrid, sin parques ni jardines  cercanos. La identificación del polen fue llevada a cabo  

33 Los pacientes que cumplían los criterios de  inclusión fueron reclutados, sometidos a  pruebas cutáneas y aleatorizados 

grupo A:22 y grupo B:11 

Primera prueba de provocación nasal 

por personal experto y se basó en la comparación con  portaobjetos y fotografías de referencia. Esta  información está disponible en www.pole- nes.com. 

Grupo A: 21  pacientes  

incluidos 

Inmunoterapia  clustoide 

Grupo B: 10  

pacientes  

incluidos 

No hay  

inmunoterapia 

Análisis estadístico 

Las estadísticas descriptivas se expresaron como la  media con los intervalos de confianza del 95%. Para las  estadísticas comparativas se utilizó la prueba de rangos  

pólenes. Los resultados se muestran en la Fig. 2. Se  

2,5 meses2 ,8 meses detectaron pequeñas cantidades de polen de gramíneas en  el aire durante la duración del estudio. Se detectaron  Segunda prueba de provocación nasalSegunda prueba de  

picos más altos de polen de C. arizonica. O. europaea provocación nasal 

con signo de pares emparejados de Wilcoxon (de dos  colas), la prueba de Mann-Whitney (de dos colas) y la  prueba ANOVA. Se utilizó el análisis de tablas de  contingencia (prueba exacta de Fisher) para analizar el  porcentaje de pacientes que habían mejorado, o no, al  final del estudio. El tamaño de la muestra se calculó  estimando que al final del estudio el 60% de los  pacientes necesitaría más de tres veces la cantidad  inicial de extracto de alérgeno para experimentar una  prueba nasal positiva en el grupo activo y el 10% en el  grupo de control para una a = 0,05 (dos colas) y una  potencia de b = 0,2 (dos colas). El número de pacientes se  incrementó en un 20% para cubrir los posibles  abandonos. El tamaño final de la muestra estimado fue  de 20 pacientes en el grupo activo y 10 en el grupo de  control. Se seleccionó una proporción1 :2 para el estudio  por razones éticas. 

Resultados  

Pacientes 

Se reclutó a 33 pacientes para el estudio y se les asignó  al azar. Treinta y un pacientes (93,9%) completaron el  ensayo. Dos pacientes (uno en cada grupo) fueron  excluidos del análisis final debido a la falta de  sensibilidad en la primera prueba de provocación nasal.  Otros cuatro (tres en el grupo activo y uno en el grupo  de control) tuvieron una reacción nasal positiva con la  solución salina en la segunda prueba de provocación  nasal y, por lo tanto, fueron excluidos del análisis  estadístico. En general, la gravedad de la rinitis alérgica se  consideró de moderada a grave según la clasificación  Aria [31]. En la figura se muestra un diagrama de flujo  del diseño del estudio y de los pacientes incluidos en  cada grupo. 1. 

Recuento de polen 

Se realizaron recuentos de polen para las gramíneas, C.  arizonica,  

P. hispanica y O. europaea, ya que los pacientes alérgicos  de Madrid están frecuentemente sensibilizados a estos  

Grupo A: 18  pacientes  

evaluados 

Grupo B: 9  pacientes  

evaluados

Fig. Diagrama esquemático1. que muestra el diseño del estudio. Al  final del estudio, se pudo analizar un total de 27 pacientes; 18 en el  Grupo A y nueve en el Grupo B. 

Fig. 2. Recuentos de polen en el área de Madrid, incluyendo  Cupressus arizonica, Platanus hispanica, Gramíneas y polen de Olea  europaea de 

Del 1 de julio al2006 30 de junio La 2007.flecha indica el periodo en  el que se realizó el estudio. 

y P. hispanica polinizó claramente fuera del periodo en el  que se realizó el estudio. 

Grupo de inmunoterapia y seguridad 

Veintiún pacientes (13 mujeres y ocho hombres) fueron  

tratados con la vacuna. Los pacientes del Grupo A  recibieron una media de 6,5 (cinco a siete) inyecciones  durante un periodo medio de 2,3 (1,2-3,5) meses. En  general, el tratamiento fue bien tolerado. No se  registraron reacciones sistémicas. Un paciente  experimentó una reacción local inmediata de gran  tamaño, con un diámetro de cm 8después de 10la  inyección. Se trató con éxito con la aplicación de una  compresa fría y mg5 de desloratadina. Seis reacciones  locales retardadas con un 

Oc Los2008 autores 

Compilación de la revista Oc Blackwell2008 Publishing Ltd, Clinical and Experimental Allergy, : 38987- 994

Se registró un diámetro medio de 11 cm y se trató también  con una aplicación de compresas frías y mg5 de  desloratadina. 

Grupo de control 

Diez pacientes del Grupo B (seis mujeres y tres  hombres) completaron el estudio. El tiempo medio entre  la prueba de provocación inicial y la final en el Grupo B  fue de 2,8 (1,7-3,5) meses. 

Pruebas cutáneas 

Las respuestas a la prueba de punción cutánea del polen  de gramíneas fueron positivas en todos los pacientes33.  No se observaron diferencias significativas entre ambos  grupos en cuanto a la magnitud media de las reacciones  de la prueba cutánea para T. paniceum, D. glomerata o la  histamina. En la tabla 1 se muestra información detallada  sobre los resultados de las pruebas cutáneas en el  momento del reclutamiento de los pacientes. Como  puede observarse, la mayoría de ellos también estaban  sensibilizados a otros aeroalérgenos. 

Retos nasales 

Treinta y un (93,9%) pacientes tuvieron una respuesta  positiva al inicio del estudio. No hubo diferencias  significativas en las concentraciones umbrales  necesarias para producir un TNP positivo entre ambos  grupos al principio y al final del estudio. 

En el primer reto, el descenso medio de la PNIF fue  del 42% ( del 72% al 0%); el 66% de los pacientes  

— 

puntuaron 

positivamente para un descenso de más del 40% en la  PNIF. El peso medio de las secreciones nasales era de  mg2316 (410-9208); el 96% 

Tabla 1. Resultados medios de las pruebas cutáneas a diferentes  alérgenos e histamina, expresados en mm2, y tasas de sensibilización a  otros aeroalérgenos 

Inmunoterapia de racimo con una mezcla de hierba modificada con  glutaraldehído 991 

de los pacientes obtuvo una puntuación positiva por un  peso superior a 500 mg. El número medio de estornudos  fue (6.71-27); el 63% de los pacientes tuvieron cinco o  más estornudos después de la prueba. 

En el segundo desafío, el descenso medio de la PNIF  fue del 40% ( del 67% al 0%); el 59% de los pacientes  

— 

puntuaron 

positivamente por un descenso de más del 40% en la PNIF.  El peso medio de las secreciones nasales fue de 2.381 mg  (567-7966); el 100% de los pacientes obtuvo una  puntuación positiva por un peso superior a 500 mg. El  número medio de estornudos fue de 6,8 (1-21); el 59% de  los pacientes tuvieron cinco o más estornudos después  de la chaladura. La prueba ANOVA demostró que las  diferencias no eran estadísticamente significativas. 

La desviación estándar (DE) media de la  

± 

concentración de alérgenos necesaria para producir una  reacción positiva en el Grupo A fue de 597,7 559,3 frente  

±± 

a 823,1 732,3 BU/mL en el Grupo B (P = 0,52; prueba de  Mann-Whitney). Sin embargo, las diferencias entre ambos  grupos se hicieron significativas al final del estudio. La  

± 

media del extracto de alérgenos necesaria en el Grupo A  

±± 

fue de BU/mL1097.3619.51 y de BU/mL617.2503.98 en Grupo B (P = 0,022). Los resultados individuales se  muestran en la Fig. 3a y b. 

También se utilizó la prueba de Mann-Whitney para  comparar las diferencias de los niveles de umbral nasal  para un TPN positivo al principio y al final del estudio.  Al final del estudio, los pacientes del Grupo A  necesitaban un umbral nasal significativamente 

Tamaño medio de la prueba  cutánea Trisetum paniceum  en mm2 

Tamaño medio de la prueba  cutánea Dactylis glomerata  en mm2 

Tamaño medio de reacción a la  histamina en mm2 

Grupo A  (n = 22) 

Grupo B  (n = 11) 

40.450.4 47.043.1 17.216.4 

Otras sensibilizaciones (% 77.2663.6 Olea europaea 59.1 (29 mm2 )54.6(29 mm2)  Platanus hispanica45 ,4 (21 mm2 )32.2(21 mm2)  Cupressus arizonica 18.2 (19 mm2 )36.4(13 mm2)  Chenopodium album 27.3 (12 mm2 )18.2(5 mm2)  

Dermatophagoides  pteronyssinus (%) 

9.1 (26 mm2 )18.2(34 mm2)  

Fig. (3.a, b) Resultados individuales de todos los participantes en el 

estudio. Azul 

Blatta orientalis 9.1 (18 mm2 ) 0  Gato27.3(20 mm2 )9.1(17 mm2)  

Perro22.7(11 mm2 )18.2(10 mm2)  

Alternaria alternata 9.1 (15 mm2 )9.1(7 mm2)  Aspergillus fumigatus 9.1 (8 mm2) 0 

Oc Los2008 autores 

Las barras (primera barra) denotan la concentración de alérgenos a la que  reaccionaron en 

al principio y la barra roja (segunda barra) la concentración necesaria  al final del estudio para experimentar una reacción positiva. Los  números de las columnas denotan el número de meses del estudio  antes de la prueba de provocación nasal inicial y la segunda, así como  el número de inyecciones. El eje Y representa 

U/mL biológica. 

Compilación de la revista Oc Blackwell2008 Publishing Ltd, Clinical and Experimental Allergy, : 38987-994

992 J. Subiza y otros 

mayor concentración umbral que al principio (525,89  vs519.63. 960,1 BU/mL677.1 al final; P = 0,013) (Fig. 2a).  

±± 

La diferencia no fue significativa para el Grupo B (891,67  vs741.9. 503617.2,9 BU/mL; P = 0,31) (Fig. 3b). 

±± 

Se utilizó la prueba de rangos con signo de pares  emparejados de Wilcoxon para buscar diferencias dentro  de los grupos en el primer y segundo desafío nasal.  Estas diferencias fueron muy significativas cuando se  analizaron los pacientes del Grupo A (P = 0,0005). En  cambio, no se detectaron diferencias significativas para  los pacientes del Grupo B (P = 0,375). 

Se utilizó la prueba exacta de Fisher para comparar el  número de pacientes que mejoraron o no en ambos  grupos tras la segunda provocación nasal. Doce  pacientes (66,6%) experimentaron una mejora en el  Grupo A frente a 1 (11,1%) en el Grupo B (P = 0,008). Los  ocho pacientes que reaccionaron a la dosis más baja de 206  BU/mL experimentaron una mejora significativa, mientras  que ninguno de los tres que reaccionaron a la dosis más  alta de 1852 BU/mL lo hizo (véase la Fig. 3a). 

Debate  

Hemos demostrado que un curso corto de inmunoterapia  de pretemporada (media de inyecciones6.5  administradas en un tiempo medio de meses2.3) con una  vacuna de polen de gramíneas modificada induce una  mejora objetiva de los chalés nasales en un número  significativo de pacientes. En el presente estudio se  utilizó una pauta preestacional agrupada, que se está  utilizando cada vez más para tratar a los pacientes  alérgicos contra la rinitis alérgica estacional. Este  esquema tiene ventajas sobre los esquemas clásicos de  acumulación de inmunoterapia. El mantenimiento se  alcanza con un menor número de inyecciones, lo que  aumenta el cumplimiento y produce un beneficio clínico  tras un corto periodo de tiempo. La inmunoterapia en  racimo se utiliza habitualmente con alérgenos, lo que  permite la administración de dosis más altas de  alérgenos. A pesar de estas ventajas, se ha publicado un  número limitado de estudios de inmunoterapia  preestacional de racimo con alérgenos de polen de hierba. 

Un problema constante en la evaluación de la  inmunoterapia es que la mayoría de los pacientes  alérgicos tienen múltiples sensibilidades, mientras que el  tratamiento tiende a ser específico para el alérgeno. Se  ha demostrado que la inmunoterapia es menos eficaz en  los pacientes polisensibilizados que en los  monosensibilizados. Los estudios realizados con  pacientes pediátricos polisensibilizados con asma no han  demostrado su eficacia [32]. Se ha sugerido que la  monosensibilización puede diferir tanto desde el punto  de vista inmunológico como clínico de la  polisensibilización, y que la inmunoterapia específica es  más eficaz en los pacientes sensibilizados a un solo  polen que en los pacientes con sensibilización a  múltiples polen [33]. Por lo tanto, la polisensibilización  puede tener una influencia negativa en los resultados de  

la inmunoterapia, especialmente si se excluyen los  alérgenos clínicamente relevantes. Por otra parte, el  efecto de la inmunoterapia en los pacientes  polisensibilizados también puede compro-

miento, si la vacuna alergénica contiene un gran  número de alérgenos, produciendo así un efecto de  dilución que puede influir en la dosis óptima. Sin  embargo, a este respecto, Marogna et al. [34] han  demostrado que los pacientes sensibilizados a las  gramíneas y al abedul obtienen los mejores resultados  clínicos cuando se incluyen ambos alérgenos. 

El estudio presentado aquí utilizó un enfoque  pragmático, y se incluyeron pacientes  polisensibilizados. Así, el 78,3% estaban  polisensibilizados en el Grupo A y el 63,6% en el Grupo  B (véase la Tabla 1). Este enfoque se acerca más a la  situación real en la práctica diaria de la alergología,  cuando se evalúan los pacientes polisensibilizados. 

Se han utilizado varios parámetros para demostrar la  eficacia clínica, incluidos los subjetivos (puntuaciones de  los síntomas y la medicación, escalas analógicas visuales  y parámetros de calidad de vida), así como los  objetivos. Los parámetros objetivos más utilizados son  las pruebas de provocación nasal y bronquial, que  reflejan la sensibilidad del órgano diana. Cuando los  pacientes son asintomáticos, las pruebas de provocación  nasal reproducen la enfermedad debido a la exposición a  un único alérgeno. Por lo tanto, se ha propuesto que la  mejor forma de evaluar hasta qué punto los pacientes  están protegidos por la inmunoterapia contra la  exposición a un alérgeno específico es el uso de desafíos  nasales específicos [35]. Las pruebas nasales fuera de la  estación del polen pueden simular la exposición natural  y proporcionar un método para comparar las respuestas  sin la interferencia de otros alérgenos. 

El presente estudio se realizó fuera de la temporada  

de polen de gramíneas y, por tanto, los pacientes estaban  asintomáticos y no recibían tratamiento farmacológico.  Se llevaron a cabo TNE al principio y al final del  estudio. Al inicio, todos los pacientes tuvieron una  respuesta positiva y no hubo diferencias significativas  entre los grupos. La diferencia se hizo significativa al  final del estudio, cuando los pacientes del grupo A  necesitaron una concentración umbral  significativamente mayor que al principio del estudio (P  = 0,013). Además, los pacientes 12(66%) experimentaron  una mejora en el Grupo A, frente a un paciente (11%) en  el Grupo B. Por el contrario, seis pacientes (33%) no  mejoraron en el Grupo A, mientras que en el Grupo B  cinco pacientes (55%) no mejoraron y tres de ellos  (33%) empeoraron (2análisis w P = 0,005). Cabe destacar  que los ocho pacientes que reaccionaron a la dosis más baja  de BU/mL206 experimentaron una mejora significativa  tras la inmunoterapia, mientras que ninguno de los que  reaccionaron a la dosis más alta probada inicialmente de  1852 BU/mL lo hizo. Estos datos pueden sugerir un mayor  papel protector de la inmunoterapia para los pacientes  más gravemente alérgicos. 

Reconocemos que en el estudio no se evaluaron los  síntomas clínicos, ya que se llevó a cabo fuera de la  temporada de polen para obtener medidas objetivas de la  eficacia a través de la TNP. No obstante, se ha sugerido  que las pruebas nasales son un buen indicador de la  eficacia clínica y un buen predictor de los síntomas  durante la estación del polen [14]. El éxito de la  pretemporada a corto plazo 

Oc Los2008 autores 

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La inmunoterapia al polen de abedul, que muestra una  disminución significativa de los síntomas y del uso de  fármacos antialérgicos bajo la exposición natural al polen,  también se acompañó de un aumento de la dosis umbral  necesaria para inducir una TNP positiva [36]. 

Al final del estudio, no se pudieron analizar los datos  de cuatro pacientes (tres del grupo A y uno del grupo B)  porque experimentaron una reacción nasal positiva con  la solución salina. Es posible que estos cuatro pacientes,  que también estaban sensibilizados a otros  aeroalérgenos, incluida la floración de C. arizonica en el  momento de la segunda provocación nasal, tuvieran una  hiperreactividad nasal debido a este hecho. Éste también  podría ser el caso de los tres pacientes del grupo B que  empeoraron según lo detectado en la segunda chal lenga. Además, hay que tener en cuenta que ya se  detectaron algunos pequeños picos de recuentos de polen  de gramíneas en Madrid durante febrero y marzo (Fig.  2), por lo que no se puede descartar una hiperreactividad  nasal debida al verdadero polen de gramíneas. Sin  embargo, creemos que la sensibilidad a los ácaros puede no  haber influido en los resultados generales, ya que los  ácaros no son alérgenos ambientales importantes en  Madrid, como se ha demostrado en publicaciones  anteriores [37]. 

Los resultados anteriores indican, por tanto, que la  eficacia de la inmunoterapia de racimo con alergoides de  gramíneas modificados con glutaraldehído en la  reducción de la reactividad nasal específica puede  puntuarse en un corto periodo de tiempo utilizando  medidas objetivas como el TNP específico incluso en  pacientes polisensibilizados. La eficacia se consiguió tras  una media de 6,5 inyecciones y en menos de 2,5 meses  (de media) en pacientes que padecían rinoconjuntivitis  con o sin asma. En estos pacientes, la importancia clínica  de otras sensibilidades también debería evaluarse y  tenerse en cuenta a la hora de elegir los alérgenos  adecuados para la inmunoterapia. 

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Oc La compilación  

de la revista de los 2008autores Oc Blackwell2008 Publishing Ltd, Clinical and Experimental Allergy, :  38987-994

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